Toma de Muestras Clínicas en Microbiología, Bioquímica y Parasitología: Procedimientos y Recomendaciones

Toma de muestras clínicas

1. Muestras de superficie

Métodos de recogida:

• 1.º Hisopado: torunda con material absorbente (rayón, dacrón, alginato cálcico, algodón). Para virus no usar alginato; para hongos no usar algodón. Medios de transporte: aerobios → Stuart-Amies; anaerobios → Cary-Blair, prereducidos, Amies, Portacult, Culturette. Los virus llevan proteínas y antibióticos; los hongos llevan agar semisólido Stuart.
• 2.º Aspiración: aguja + jeringa, catéter + aspirado.
• 3.º Raspado: lesión cutánea.

2. Exudados y trasudados

• Exudado: filtrado de un vaso sanguíneo a un tejido; proceso inflamatorio, traumatismo o agentes infecciosos.
• Trasudado: filtrado de plasma; no hay proceso inflamatorio, bajo contenido proteico, puede contener o no células. Si aumenta, se trata de edema.

3. Muestras del tracto respiratorio

Precauciones: guantes y mascarilla.

3.1 Faringoamigdalitis

• Laboratorio de microbiología.
• 1.er hisopo: detección de antígeno, sin medio de transporte.
• 2.º hisopo: cultivo. Buscar: Streptococcus pyogenes (amigdalitis y faringitis bacteriana); Neisseria gonorrhoeae (ITS, gonorrea, afecta vías respiratorias); Haemophilus influenzae (gripe); Corynebacterium diphtheriae (difteria).

3.2 Nasofaringe

Frotis o aspirado.

• Frotis: Neisseria meningitidis, Bordetella pertussis (tosferina), virus SARS-CoV-2. Hisopo flexible y medio de transporte.
• Aspirado: catéter y aspiración con jeringa. Neisseria meningitidis, Bordetella pertussis, Corynebacterium, Streptococcus pyogenes, virus respiratorio sincitial.

3.3 Nasal

Staphylococcus aureus.

4. Muestras del tubo digestivo

4.1 Oral

Candidiasis (hongo levaduriforme), gingivitis. Se recoge con 1 hisopo (desecho) y 2.º hisopo con medio de transporte.

4.2 Rectal

• Posición: ginecológica o apoyado sobre codos en camilla.
• Gérmenes: Neisseria gonorrhoeae (ITS): introducir 2-3 cm, sin algodón; si es de algodón, tratado con carbón.
• Chlamydia trachomatis (ITS): medio de transporte especial, introducir 3-5 cm, presionar hacia las crestas rectales y colocar en medio de transporte.

5. Muestras genitourinarias

5.1 Uretral

Dos hisopos; examen directo y cultivo. Sin orinar 1 h antes, sin lavado previo ni cremas. Primero la orina es mejor; si hay mucho exudado, solo hisopo; si hay poco exudado, alginato cálcico e introducir en uretra.

5.2 Balanoprepucial

No orinar 2 h antes, sin lavado, abstinencia de 24 h. Un hisopo con medio de transporte Stuart-Amies.

5.3 Exudado vaginal

Dos hisopos; examen directo y cultivo. Buscar: Candida spp., Trichomonas vaginalis, Gardnerella vaginalis (no ITS), bacterias. Hisopo de alginato cálcico y dacrón + Stuart-Amies. No lavar, no aplicar pomadas, no estar menstruando.

5.4 Exudado endocervical

Chlamydia trachomatis, Mycoplasma hominis (pielonefritis), Ureaplasma urealyticum (uretritis). Dos hisopos, tres para Chlamydia.

6. Exudado vaginorrectal

Embarazo de 35-36 semanas: Streptococcus agalactiae (parálisis, sordera, ceguera). Un hisopo: 1.º vagina, 2.º recto. Antibiótico.

7. Secreción patológica de mamas

Fuera del proceso de lactancia: lechosas (galactorrea), o con sangre, células. Se realiza citología: portaobjetos, extensión y spray. Cultivo: Staphylococcus aureus (patógeno).

8. Exudado de oído

• Externo: cabeza hacia un lado, hisopo, Stuart-Amies.
• Interno: otorrinolaringología, timpanocentesis, con otoscopio, aspirado en 2 tubos: aerobio y anaerobio.

9. Exudado de ojos

Conjuntival:

• 1. Tracoma: Chlamydia trachomatis, medio de transporte específico (Bartels-Flextrans) y VTM Copan.
• 2. Meningitis en neonato: Neisseria gonorrhoeae.
• 3. Conjuntivitis: Moraxella lacunata causa blefaroconjuntivitis. La inflamación crónica del margen palpebral que afecta conjuntiva y córnea se denomina blefaroconjuntivitis; si solo afecta al párpado, es blefaritis.

Orina de 24 horas y estudios bioquímicos

10. Orina de 24 horas

• Catecolaminas: adrenalina, noradrenalina, dopamina.
• Metanefrinas: normetanefrina, metanefrina.
• Metabolito: ácido vanilmandélico (AVM).
• Dos botes de 2 L con HCl 6 N para conservar el AVM; incluir instrucciones y volante.
• Indicación: feocromocitoma. Cribado en asintomáticos.

11. Conservantes para orina

• HCl: catecolaminas (feocromocitoma).
• Carbonato sódico: porfirinas.
• Clorhexidina: conserva la glucosa.
• Fluoruro sódico: glucosa.

Estudio de heces

12. Bioquímica en heces

12.1 Macroscópico

• Cantidad: 100-300 g/día.
• Aspecto: sólidas, marrones. Acólicas: colestasis (no hay bilis). Olor: sulfuroso, fecal; en infección, rancio; en orina, amoniaco.
• pH: 6,7-7,2 (indicador de pH).
• Observar presencia de sangre, moco o pus.

12.2 Digestión

• Grasas (cualitativo): calentar, Sudán; grasa neutra → esteatorrea.
• Hidratos de carbono: lugol; almidón no digerido → amilorrea.
• Proteínas: eosina; fibra muscular no digerida → creatorrea.

12.3 Estudios especiales

• Leucocitos: azul de metileno de Loeffler (infección).
• Calprotectina: técnica ELISA; biomarcador que detecta enfermedad inflamatoria intestinal y colitis ulcerosa.
• Enzima pancreática: evalúa la función del páncreas exocrino; elastasa 1 en heces (elastasa). Se lava, se añade reactivo 1 (marcador de enzima), se lava y se añade reactivo 2 (color); se mide y cuantifica la enzima.
• Técnica de van de Kamer: cuantifica la grasa en heces; 5 días sin grasa, recogida en el 4.º y 5.º día.
• Sangre oculta en heces: cribado en 50-69 años; método guayaco (referencia) e inmunodiagnóstico.

13. Microbiología en heces

Bacteria patógena: coprocultivo en nevera (2-8 °C). Tinción de Gram o antibiograma. Bacterias: Salmonella, Shigella, Yersinia, Campylobacter, E. coli, Vibrio cholerae.

14. Parasitología en heces

Parásito intestinal, temperatura ambiente. Conservantes: MIF, meticulato, yodo, formol, PVA (alcohol polivinílico), formol 5-10 % (1:3).

Pruebas: preparado en fresco; añadir a veces lugol. Técnicas de concentración: Faust (filtración), Ritchie (sedimentación).

Parásitos:

• Protozoos: Giardia lamblia (quiste y trofozoíto).
• Helmintos: nematelmintos (oxiuros); platelmintos (tenia).

Recogida con hisopo rectal: ano, giro, saco; se analiza.

Jugo gástrico, jugo duodenal y semen

15. Jugo gástrico

• Sonda nasogástrica: desde la nariz hasta el estómago; se introduce la sonda en ayunas durante 4 h, cada 15 min.
• Se administra histamina y se recoge a la hora.
• Aspecto: amarillo, verde-biliverde; pH 6-7.
• Centrifugar: sedimento para citología y sobrenadante para bioquímica.

16. Jugo duodenal

• Obtención: gastroscopia (endoscopia) o sonda nasoduodenal.
• Parásito intestinal: color amarillo, incoloro, sin bilis. Muy amarillo: ictericia. Rojo: sangrado. Centrifugar.

17. Semen

Suspensión de espermatozoides en plasma seminal.

17.1 Plasma seminal

Glándulas, epidídimo (L-carnitina), vesícula seminal (fructosa), próstata (ácido cítrico); bioquímica.

17.2 Espermatozoides

• Fertilidad: seminograma.
• Macroscópico: volumen 1,5 mL, pH ≥ 7,2, color blanco normal, olor a lejía, tiempo de licuefacción 15 min.
• Microscópico: directo; motilidad (rápida progresiva, lenta progresiva, no progresiva, inmóvil); vitalidad (vivo/muerto, test eosina-nigrosina); recuento: 15 millones/mL; 39 millones/eyaculado; morfología: acrosoma.

17.3 Regulación hormonal

Hipotálamo → GnRH → hipófisis anterior → LH y FSH → testículo → testosterona (LH), espermatogénesis (FSH).