Vectores de clonación: plásmidos, fago λ y cósmidos en biología molecular

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Resumen

El texto explica por qué los fragmentos de ADN necesitan vectores para entrar en células huésped y describe tres vectores de clonación: los plásmidos, el bacteriófago λ y los cósmidos. También incluye la técnica de Western blot o inmunoblot para detectar proteínas específicas, con sus métodos directo e indirecto. El estudiante aprenderá la capacidad de carga de cada vector y el funcionamiento básico de estas técnicas.

Puntos clave

  • Los vectores son moléculas de ADN que transportan fragmentos de restricción y permiten introducirlos en células huésped.
  • Los vectores plasmídicos transportan generalmente hasta 10 kb de ADN insertado.
  • El fago λ es un bacteriófago que infecta bacterias y se usa para insertos más largos; sus placas de lisis aparecen sobre un césped bacteriano.
  • Los cósmidos son vectores híbridos que contienen la secuencia cos del fago λ y secuencias plasmídicas, y pueden transportar casi 50 kb.
  • El Western blot separa proteínas por electroforesis, las transfiere a una membrana y las detecta con anticuerpos marcados.
  • En el método directo el anticuerpo primario está marcado; en el indirecto se usa un anticuerpo secundario marcado.

Ponte a prueba

Vectores de Clonación en Biología Molecular

Plásmidos

Los fragmentos de restricción de ADN no pueden entrar sin más en las células huésped para ser clonados. Lo consiguen insertándose en moléculas de ADN llamadas vectores. Es decir, los vectores son esencialmente moléculas de ADN transportadoras. Los vectores de clonación más empleados actualmente se describen a continuación:

Bacteriófagos

Los vectores plasmídicos transportan, generalmente, hasta 10 kb de ADN insertado. En ciertos experimentos son necesarios trozos más largos, en estos casos los vectores son ciertos bacteriófagos. Un bacteriófago es un virus que infecta exclusivamente a bacterias. Uno de los más utilizados es el fago λ. El método seguido para clonar ADN utilizando como vector el fago λ consiste en extraer el ADN de una preparación de fago y en la eliminación del grupo central de genes por tratamiento con una enzima de restricción. El ADN a clonar se corta con la misma enzima y se liga entre los brazos del cromosoma del fago. Luego, se empaqueta el cromosoma recombinante dentro de las proteínas del fago para formar un virus recombinante. Este virus puede infectar células bacterianas y replicar su cromosoma, incluido el inserto de ADN. Las placas de lisis o “calvas”, correspondientes a células infectadas, aparecen sobre un césped bacteriano.

Cósmidos

Son vectores híbridos, que se construyen a partir de fragmentos de distintas procedencias que se unen in vitro tras cortarse con la misma enzima de restricción. La ligasa sella la zona híbrida. Los cósmidos son construidos mediante la unión de partes del cromosoma del fago lambda y de plásmidos. Contienen la secuencia “cos” del fago λ, necesaria para el empaquetamiento del ADN del fago dentro de la cubierta proteica, y contienen también secuencias plasmídicas necesarias para la replicación. Tienen, además, genes de resistencia a antibióticos de origen plasmídico que nos ayudan a identificar las células huésped que contienen los cósmidos recombinantes. Después de insertar fragmentos de ADN, los cósmidos recombinantes se empaquetan en la cápside proteica para formar partículas de fago infectivas. Una vez dentro de la célula huésped bacteriana, el cósmido se replica como un plásmido. Los cósmidos pueden transportar casi 50 kb de ADN insertado, mucho más que lo que puede llevar el vector lambda.

Detección de Proteínas Específicas: Western Blot o Inmunoblot

El Western blot, o inmunoblot, es una técnica analítica usada para detectar proteínas específicas en una muestra determinada (una mezcla compleja de proteínas, como un extracto tisular). Mediante una electroforesis en gel se separan las proteínas atendiendo al criterio que se desee: peso molecular, estructura, hidrofobicidad, etc. Hay casi tantas posibilidades como tipos de electroforesis existen. Luego son transferidas a una membrana adsorbente (nitrocelulosa o de PVDF, polivinildifluoruro) y se une a la molécula transferida un anticuerpo (Ab) específico marcado con una enzima. Por último, se añade un sustrato apropiado para dicha enzima de manera que se forme un producto detectable (coloreado o fluorescente). Existen dos métodos de detección:

  • Directo: el anticuerpo primario marcado se une al antígeno (Ag) de la membrana y reacciona con el sustrato originando una señal detectable.
  • Indirecto: el anticuerpo primario sin marcar reacciona con el antígeno. Luego un anticuerpo secundario marcado se une al primero y reacciona con el sustrato, originando una señal detectable.

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Preguntas frecuentes

¿Cuánto ADN puede transportar un plásmido como vector?

Los vectores plasmídicos transportan, generalmente, hasta 10 kb de ADN insertado. Para fragmentos más largos se emplean bacteriófagos o cósmidos.

¿Qué ventaja tienen los cósmidos frente al fago λ?

Los cósmidos pueden transportar casi 50 kb de ADN insertado, mucho más que el vector lambda. Además, se replican como plásmidos dentro de la bacteria.

¿Cuál es la diferencia entre el método directo e indirecto del Western blot?

En el método directo el anticuerpo primario ya está marcado con una enzima. En el indirecto, el anticuerpo primario no está marcado y se detecta con un anticuerpo secundario marcado.

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Test

1. ¿Para qué sirven los vectores en la clonación de ADN?
2. ¿Qué cantidad aproximada de ADN insertado transportan los vectores plasmídicos?
3. ¿Qué es un bacteriófago?
4. ¿Qué secuencia del fago λ es necesaria en los cósmidos para empaquetar el ADN en la cubierta proteica?
5. ¿Qué función cumplen los genes de resistencia a antibióticos en los cósmidos?
6. ¿Sobre qué tipo de membrana se transfieren las proteínas en el Western blot?

Preguntas generadas con IA a partir del documento: comprueba las respuestas con el texto.