Protocolo de Diagnóstico de Parasitosis Intestinal: Recolección y Métodos de Laboratorio

CLASE 1: MARABI

Parasitismo Intestinal

El parasitismo intestinal es una afección común que requiere un diagnóstico preciso. A continuación, se detallan los aspectos clínicos y los protocolos de laboratorio.

Definición de Diarrea

• Diarrea: Se define por deposiciones que pueden sumar cuatro evacuaciones o más en un día. La consistencia puede ser pastosa o líquida.
• Un adulto debe defecar al día como máximo 250 gramos o 1/4 de kilo.

Recolección de Muestras Fecales: Protocolo y Consideraciones

¿Qué preguntar a la madre o cuidador durante la afección?

• Si el paciente está recibiendo algún tratamiento farmacológico.
• Se debe informar a la madre si la causa es parasitaria o de otro origen. Para descartar parásitos (método más rápido y barato), se solicita la muestra fecal; si se sospecha de otro origen, se puede solicitar un urocultivo.

Recomendaciones para la recolección de la muestra

a) Paciente lactante (menor de 2 años)

1. La muestra debe tomarse directamente del pañal.
2. La madre, utilizando un bajalenguas, debe tomar una muestra y colocarla en un envase de plástico de tapa verde (nunca mezclar con la orina).
3. La defecación debe estar libre de polvo y tierra.
4. Tratamiento antiparasitario previo: Si el niño está recibiendo tratamiento antiparasitario, se debe esperar 15 días después de terminar la dosis para solicitar la muestra de materia fecal. Los antiparasitarios circulan a nivel plasmático y desaparecen gradualmente.
5. La muestra debe guardarse en un ambiente fresco.
6. Si la muestra es diarreica, tiene un tiempo libre de procesamiento. Si la materia fecal es DISENTÉRICA (con sangre), debe ser procesada DENTRO DE LAS 4 HORAS posteriores a su evacuación.

b) Paciente mayor de 2 años

Se siguen las mismas indicaciones de recolección, asegurando la higiene y el tiempo de procesamiento.

Epidemiología y Observación Macroscópica

Parásitos prevalentes en Ica (Perú)

En Ica, la Giardia lamblia ocupa el primer lugar en prevalencia.

• Al observar una materia fecal diarreica que sea esteatorreica (amarillenta), característica de la giardiasis, es posible observar el trofozoito en pleno movimiento.
• Si la muestra es disentérica, es posible que sea causada por Entamoeba histolytica, y se observarán trofozoitos moviéndose.

Procesamiento de Muestras en Laboratorio

Recepción y Codificación

Una vez que la muestra fecal llega al laboratorio, se realiza la recepción y codificación. El proceso depende de la consistencia de la muestra: si es diarrea (se procede inmediatamente) o si es materia fecal formada.

Formas de Preparación de una Muestra

1) Preparación en Fresco (Examen Directo)

Este método se realiza en una lámina, y la técnica varía según la consistencia:

A) Muestra Diarreica

• Líquida: No es necesario utilizar solución salina fisiológica. Solo se coloca una gota de diarrea en la lámina y sobre ella se coloca la laminilla para su observación. Se busca el trofozoito del parásito.
• Pastosa: Se necesita una gota de solución salina fisiológica. Se busca el trofozoito del parásito.

B) Muestra Formada

En una parte de la lámina se coloca solución salina fisiológica (SSF) y en otra parte se coloca Lugol parasitológico.

1. Primero, se mezclan las heces con la SSF.
2. Segundo, se mezcla en el Lugol (si se hace primero, mata al parásito). Luego, se coloca la lámina cubreobjeto.

Observación Microscópica

Una vez preparada la muestra, se observará:

• En 10x: Se buscan huevos de helmintos y larvas (que pueden confundirse con otras estructuras).
• En 40x: Se utiliza para la identificación detallada de quistes o trofozoitos.

Sensibilidad del Examen Directo

Con este examen, el porcentaje de probabilidad de encontrar quistes, larvas o huevos es bajo.

• Sensibilidad: Es de 30-40% para encontrar el parásito. Si no se encuentra, se reporta como NEGATIVO (no presencia de parásito).
• Se recomienda a la madre que se realicen varias muestras.
• En el extranjero, el número de muestras seriadas para descartar parásitos es de 5 muestras tomadas durante 5 días. En Perú, se solicitan solo 3 muestras en 3 días.

2) Métodos de Concentración

Ante el bajo porcentaje de sensibilidad que ofrece el método directo, se deben emplear los métodos de concentración.

• Se utiliza mayor cantidad de muestra fecal.
• La sensibilidad para encontrar actividad parasitaria es de 60-70%.

3) Coproantígeno

Este método ofrece la mayor sensibilidad diagnóstica.

• Se puede aplicar un método de ELISA invertido. En un ELISA normal, el antígeno se encuentra en los pocillos; en este caso, los anticuerpos ya están en el pocillo y se añade la materia fecal.
• Se busca el coproantígeno contra Giardia. En el pocillo debe estar el anticuerpo contra Giardia.
• Este tipo de método se encuentra disponible en algunos hospitales.
• Porcentaje de sensibilidad: 98-99%.
• Nota: Ningún método tiene una sensibilidad del 100%.

Luego de obtener los resultados, si se identifica un protozoario (se administra metronidazol) o un helminto (no se administra metronidazol, se dan antihelmínticos), se efectúa el tratamiento correspondiente.

Elementos No Parasitarios en Heces

Es crucial diferenciar las estructuras parasitarias de la materia orgánica que puede confundirse durante la observación microscópica.

1) De Origen Vegetal

• Espinas: Estructuras microscópicas que se confunden con larvas.
• Conductos leñosos.
• Células vegetales en lámina.
• Células vegetales en panal.
• Tejido vegetal semidigerido: Aspecto verdoso.
• Fibras o filamentos vegetales.
• Células con gránulos de almidón: Toman color lila o morado, dependiendo de la concentración.
• Glóbulos de grasa: Color amarillo con naranja, pueden ser de origen vegetal o animal.

2) De Origen Animal

• Tejidos musculares.
• Tejido animal semidigerido.
• Fibras musculares.