Fundamentos de Microbiología Clínica: Muestras, Patógenos y Métodos

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Toma de Muestra y Biota Normal

Tipos de Muestra

Las muestras biológicas pueden ser de diversos tipos, incluyendo líquidos (sangre, orina, LCR), tejidos (biopsias) e hisopados de diferentes superficies.

Requisitos de una Muestra Adecuada

  • Recolectar la muestra del sitio real de la infección.
  • Evitar la contaminación con microbiota comensal.
  • Tomar la muestra antes de iniciar un tratamiento con antibióticos, si es posible.
  • Asegurar una cantidad suficiente y un etiquetado completo.

Rotulación Obligatoria

Toda muestra debe estar correctamente identificada con: nombre del paciente, número de identificación (ID), origen de la muestra, médico solicitante, fecha y hora de recolección, y nombre del responsable de la toma.

Medios de Transporte Comunes

  • Medio de Stuart: Ideal para exudados faríngeos, nasales, entre otros.
  • Medio de Cary-Blair: Utilizado principalmente para el transporte de muestras fecales.
  • Muestras para anaerobios: Se deben transportar en una jeringa sellada o en un medio con CO₂ libre de O₂.

Es crucial sembrar la muestra lo antes posible para garantizar la viabilidad de los microorganismos.

Género Pseudomonas

Características

  • Bacilo Gram negativo, aerobio estricto, no fermentador y flagelado (móvil).
  • Temperatura óptima de crecimiento: 37°C.
  • Produce pigmentos característicos como la piocianina (azul-verdoso) y la fluoresceína (amarillo-verdoso, fluorescente).
  • Se cultiva en medios como EMB, MacConkey, Agar Desoxicolato-Citrato y, de forma selectiva, en Agar Cetrimida (Pseudocel).
  • Produce endotoxinas y presenta un olor característico (similar a uvas).

Pruebas Bioquímicas

  • Prueba TSI (Triple Sugar Iron): No fermenta glucosa, lactosa ni sacarosa (pico y fondo alcalinos).
  • Medio OF (Oxidación-Fermentación): Demuestra su metabolismo oxidativo.
    • Tubo abierto (aerobio) amarillo y tubo cerrado (anaerobio) verde indica un metabolismo oxidativo.
    • Ambos tubos amarillos indican un metabolismo fermentativo.
    • Ambos tubos verdes indican un metabolismo no sacarolítico (inerte).
  • Prueba SIM: Positiva para la movilidad.
  • Agar F (Fluoresceína): Se observa fluorescencia bajo luz de Wood para detectar la fluoresceína.

Infecciones de Transmisión Sexual (ITS)

Agentes Más Comunes

  • Neisseria gonorrhoeae: Gonorrea
  • Chlamydia trachomatis: Clamidiasis
  • Treponema pallidum: Sífilis
  • Trichomonas vaginalis: Tricomoniasis
  • Candida albicans: Candidiasis vulvovaginal
  • Haemophilus ducreyi: Chancro blando
  • VHS, VPH, VIH: Infecciones virales

Células Clave (Clue Cells)

Son células epiteliales vaginales completamente recubiertas por cocobacilos. Su presencia es un criterio diagnóstico clave para la vaginosis bacteriana, comúnmente asociada a Gardnerella vaginalis.

Lactobacillus sp.

Componente principal de la flora vaginal normal en mujeres sanas. Su metabolismo produce ácido láctico, manteniendo el pH vaginal ácido (entre 3.8 y 4.5), lo que inhibe el crecimiento de patógenos.

Diagnóstico de N. gonorrhoeae

  • Medios de cultivo: Requiere medios enriquecidos como el Agar Chocolate y medios selectivos como Thayer-Martin, incubados en una atmósfera con CO₂.
  • Tinción de Gram: Se observan diplococos Gram negativos intracelulares (dentro de los leucocitos).
  • Pruebas bioquímicas: Oxidasa positiva y fermenta únicamente la glucosa.

Análisis de Exudado Vaginal

  • Leucocitos aumentados: Indican un proceso inflamatorio o infeccioso.
  • Ausencia de lactobacilos: Sugiere un desequilibrio en la microbiota (disbiosis).
  • Trichomonas vaginalis: Se observa como un protozoario flagelado y móvil en el examen en fresco.
  • Levaduras y pseudohifas: Son indicativas de una candidiasis vaginal.

Infecciones de las Vías Urinarias (IVU)

Definición

Es una infección causada por microorganismos, principalmente bacterias, que afecta cualquier parte del tracto urinario. Puede afectar:

  • Uretra (uretritis)
  • Vejiga (cistitis)
  • Riñones (pielonefritis)

Agentes Más Comunes

  • Escherichia coli: Responsable de aproximadamente el 80% de los casos.
  • Otras enterobacterias como Proteus sp., Klebsiella sp. y Enterobacter sp.
  • Staphylococcus saprophyticus: Causa común en mujeres jóvenes sexualmente activas.
  • Pseudomonas aeruginosa: Frecuente en infecciones nosocomiales o asociadas a catéteres.

Síntomas

Los síntomas comunes incluyen disuria (dolor al orinar), tenesmo vesical, urgencia miccional y dolor suprapúbico. La fiebre y el dolor lumbar suelen indicar una infección más grave, como la pielonefritis.

Diagnóstico

  • Urocultivo: Es el estándar de oro. La muestra se obtiene por la técnica del chorro medio y se siembra en medios como Agar CLED y Agar Sangre.
  • Interpretación del recuento: Un recuento superior a 100,000 Unidades Formadoras de Colonias por mililitro (UFC/mL) se considera indicativo de infección significativa (criterio de Kass).
  • Tinción de Gram: Permite una visualización rápida de bacterias y leucocitos en la orina.
  • Examen General de Orina (EGO): Hallazgos sugestivos incluyen piuria (presencia de leucocitos), bacteriuria y nitritos positivos.

Microorganismos Anaerobios

Características

  • Son microorganismos que no pueden crecer en presencia de oxígeno atmosférico.
  • Se clasifican en anaerobios estrictos (el oxígeno es tóxico) y aerotolerantes (pueden sobrevivir pero no crecer en presencia de oxígeno).
  • Forman parte de la microbiota normal del tracto gastrointestinal, la cavidad oral y el tracto genital femenino.

Patógenos Comunes

  • Bacteroides fragilis
  • Clostridium perfringens, C. difficile, C. tetani
  • Fusobacterium, Prevotella, Peptostreptococcus

Enfermedades Asociadas

Causan infecciones profundas y polimicrobianas, como abscesos, gangrena gaseosa (causada por C. perfringens) y colitis pseudomembranosa (causada por C. difficile). Son comunes en infecciones postquirúrgicas y en infecciones derivadas de mordeduras.

Manejo en Laboratorio

Instrumentos y Materiales para Anaerobiosis

  • Jarra de anaerobiosis: Contenedor hermético que utiliza un sobre generador de gas (H₂ y CO₂) y un catalizador de paladio para eliminar el oxígeno.
  • Bolsas o sistemas comerciales (tipo GasPak): Alternativa a las jarras para incubar un número menor de placas.

Medios de Cultivo Especiales

  • Caldo Tioglicolato: Medio líquido que permite el crecimiento de anaerobios en el fondo del tubo, donde la concentración de oxígeno es mínima.
  • Medios sólidos: Se utilizan agares enriquecidos y prerreducidos como el Agar Schaedler o el Agar Sangre Anaerobio CDC, suplementados con hemina y vitamina K (menadiona).

Indicadores de Anaerobiosis

Se utiliza azul de metileno, un indicador de óxido-reducción que se vuelve incoloro en condiciones de anaerobiosis y permanece azul en presencia de oxígeno.

Toma y Transporte de Muestra

La recolección debe realizarse mediante aspiración con jeringa, eliminando el aire y sellándola, o utilizando viales de transporte anaeróbico. Es fundamental evitar el contacto de la muestra con el oxígeno en todo momento.

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