Bacteriología Médica: Identificación, Diagnóstico y Tratamiento de Patógenos Clínicos

Principales Patógenos Bacterianos en Medicina

El estudio microbiológico de bacterias patógenas requiere reconocer sus características morfológicas, factores de virulencia, métodos de diagnóstico (cultivo, tinciones, serología y biología molecular) y las pautas terapéuticas indicadas.

Bacterias Intracelulares, Espiroquetas y Bacilos Gram Positivos

• Rickettsia: Cocobacilos Gram negativos intracelulares obligados.
  • Especies principales: R. rickettsii, R. prowazekii, R. typhi.
  • Diagnóstico (Dx): Pruebas serológicas, reacción en cadena de la polimerasa (PCR), tinción de Giemsa y anticuerpos fluorescentes por técnica directa.
  • Tratamiento (Tx): Doxiciclina.
• Chlamydia: Bacterias intracelulares Gram negativas.
  • Especies: C. trachomatis, C. pneumoniae, C. psittaci.
  • Dx: Pruebas de amplificación de ácidos nucleicos (NAAT), ELISA, tinción de Giemsa y tinción de Gram (-).
• Mycoplasma (y Ureaplasma): Bacterias carentes de pared celular.
  • Especies: M. pneumoniae, M. genitalium, Ureaplasma urealyticum.
  • Dx: PCR, serología y tinción fluorescente de Hoechst.
• Treponema pallidum: Espiroqueta causal de la sífilis y treponematosis endémicas.
  • Subespecies: subsp. pertenue (frambesia), subsp. endemicum (bejel), subsp. carateum (pinta).
  • Dx: Microscopía de campo oscuro, inmunofluorescencia y pruebas serológicas no treponémicas (VDRL, RPR) y treponémicas.
• Corynebacterium: Bacilos Gram positivos agrupados en formas características («letras chinas» o en «V»), catalasa positivos (+).
  • Especies: C. diphtheriae, C. jeikeium, C. urealyticum.
  • Dx: Tinción de Gram, cultivo en medio de Löffler, agar telurito de Tinsdale, PCR y prueba de inmunodifusión de Elek.
• Listeria: Bacilos Gram positivos intracelulares facultativos.
  • Especies: L. innocua, L. monocytogenes (catalasa +, oxidasa -, prueba de CAMP +, PCR).
  • Factores de virulencia: Listeriolisina O (LLO).
• Clostridium: Bacilos Gram positivos anaerobios formadores de esporas.
  • Clostridium tetani: Espora terminal prominente con morfología típica en «palillo de tambor».
  • Clostridium perfringens: Produce doble halo de β-hemólisis y toxinas mayores (alfa, beta, épsilon, iota). Cultivo en caldo tioglicolato, agar sangre y medio de carne picada/molida.

Bacterias Gram Negativas Microaerófilas, Fastidiosas y Zoonóticas

• Campylobacter: Bacilos Gram negativos curvados en forma de «coma» o de «alas de gaviota», oxidasa +, móviles y no esporulados.
  • Especies: C. coli, C. jejuni, C. fetus, C. upsaliensis.
  • Muestras y Dx: Heces diarreicas sembradas en medios selectivos como agar Skirrow.
• Helicobacter: Bacilo curvado Gram negativo, oxidasa +, catalasa +, provisto de 4 a 6 flagelos unipolarmente insertados.
  • Características: Elevada producción de ureasa.
  • Dx: Prueba del aliento con urea marcada, PCR, detección de anticuerpos en sangre y antígenos (Ag) en heces.
• Bordetella: Cocobacilos Gram negativos, aerobios estrictos u obligados.
  • Especies: B. pertussis, B. parapertussis, B. bronchiseptica.
  • Factores de virulencia (F.V.): Toxina pertúsica (tosferinosa), hemaglutinina filamentosa, fimbrias y pertactina.
  • Dx: Cultivo en medios selectivos Regan-Lowe y Bordet-Gengou.
• Brucella: Cocobacilos Gram negativos, inmóviles, no esporulados y no capsulados.
  • Especies: B. abortus, B. melitensis, B. suis, B. canis.
  • Dx: Prueba de Rosa de Bengala, PCR, aislamiento en agar Brucella, agar tripticasa soya (TSA) y medio de Farrell.
• Legionella: Bacilo Gram negativo, aerobio estricto.
  • Cuadros clínicos: Enfermedad del legionario y Fiebre de Pontiac.
  • Dx: Detección de antígeno urinario y cultivo en agar de extracto de levadura con carbón tamponado (BCYE) suplementado con L-cisteína.
• Haemophilus influenzae: Cocobacilo Gram negativo pleomórfico (particularmente la cepa serotipo Hib).
  • Cuadros clínicos: Otitis media, meningitis y epiglotitis.
  • Dx: Cultivo en agar chocolate a partir de muestras biológicas (sangre, líquido cefalorraquídeo [LCR]).
• Haemophilus ducreyi: Agente etiológico del chancroide (chancro blando).
  • Morfología: Cocobacilo pleomórfico con disposición característica en «vías de tren» o «cardúmenes de peces».
  • Muestra y cultivo: Exudado obtenido de úlceras genitales; sembrado en agar chocolate o agar gonocócico adicionado con suplemento de crecimiento Isovitalex, incubado a 33-35 °C con 5-10 % de CO₂ y humedad.

Micobacterias: Tuberculosis, Lepra y Especies Atípicas

Mycobacterium tuberculosis

Bacilo ácido-alcohol resistente (BAAR) con forma de bastoncillo de extremos redondeados.

• Muestras clínicas (Mx): Esputo, lavado gástrico, LCR y líquido pleural.
• Factores de riesgo: Tiempo de exposición en ambientes contaminados, intensidad y duración de la exposición, estado inmunológico del hospedero y situaciones de hacinamiento.
• Transporte de muestras: Envío obligatorio en sistema de triple embalaje y mantenimiento estricto de la cadena de frío.
• Diagnóstico microbiológico:
  • Baciloscopia: Tinción de Ziehl-Neelsen para confirmar la presencia de BAAR y cuantificar el número de bacilos observados por campo microscópico.
  • Cultivo: Descontaminación por el método de Petroff e inoculación en medio Löwenstein-Jensen, o método de Kudoh en medio Ogawa.
  • Morfología de colonias: Crecimiento lento de aspecto rugoso, colonias secas y amarillentas, descritas habitualmente en «migas de pan».
• Pruebas complementarias y moleculares:
  • Prueba molecular rápida GeneXpert MTB/RIF (indicada de forma prioritaria en sospecha de resistencia a rifampicina [TB-RR] y en pacientes previamente tratados).
  • Prueba de la tuberculina / PPD (lectura positiva entre 5 a 15 mm según factores de riesgo).
  • Ensayos de liberación de interferón gamma en sangre (IGRA).
  • Determinación de adenosina desaminasa (ADA).
• Tratamiento: Esquema primario que incluye isoniacida, rifampicina, pirazinamida y etambutol.

Mycobacterium leprae

Conocido como el Bacilo de Hansen (BAAR), microorganismo aerobio estricto que no prolifera en medios de cultivo acelulares.

• Complicaciones clínicas: Ceguera, daño a nervios periféricos y deformidades cutáneas y osteoarticulares severas.
• Dx: Baciloscopia de linfa o biopsia tisular, PCR y pruebas serológicas complementarias.
• Tx (Terapia Multidroga): Dapsona, rifampicina y clofazimina.

Micobacterias No Tuberculosas o Atípicas

Patógenos oportunistas o ambientales con diversas manifestaciones clínicas:

• Especies representativas: Complejo Mycobacterium avium-intracellulare (MAC), Mycobacterium marinum, Mycobacterium kansasii.
• Patologías asociadas: Pápulas cutáneas, úlceras, linfadenitis cervical o regional, infecciones pulmonares crónicas y enfermedades sistémicas diseminadas en pacientes inmunocomprometidos.