Las hoja

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NUTRICIÓN MINERAL

La nutrición hace referencia a los pasos o procesos  como las plantas absorben y asimilan  los elementos minerales del suelo  y los emplean para su crecimiento y desarrollo

CLASIFICACIÓN DE LOS ELEMENTOS MINERALES:

  • Elementos esenciales: son aquellos elementos minerales que en ausencia de el  la planta no puede vivir
  • Elemento  útiles o  no esenciales : a un cuando la planta pueda vivir en ausencia de ellos su presencia ayuda   a la planta al crecimiento, reproducción, y a condiciones desfavorable del medio  como el clima y las plagas
  • Elementos tóxicos: son aquellos elementos minerales que en presencia en cantidades grandes ocasionan la  muerte a la planta

CLASIFICACIÓN DE LOS ELEMENTOS MINERALES:

  •  Macronutrientes: Nitrógeno (N) Fosforo (P) Potasio (K) Azufre (S) Calcio (Ca) Magnesio (Mg)
  • Micronutrientes:   Hierro (Fe) Cobre (Cu) Zinc (Zn) Cloro (Cl) Manganeso (Mn) Boro (Bo) Molibdeno (Mo) Silicio (Si) Níquel (Ni) Sodio (Na)

OBJETIVOS

1. Determinar, mediante síntomas visuales, el elemento faltante en soluciones nutritivas problema.

2. Evaluar el efecto de la deficiencia de los elementos minerales sobre el crecimiento de la planta

 MATERIALES:

frasco de un litro, bolsa de papel y polietileno, algodón, tapa de animes, termómetros, plántulas de maíz, soluciones nutritivas, ligas, marcadores, agua destilada, Solución de cloro, Cilindro graduado, etiquetas, tirro, balanza, estufa, marcadores, recla, tijeras, luximetro, papel absorbente, bandejas



METODOS:

1. Efecto de la nutrición mineral en el crecimiento de la planta Procedimiento

1. Vierta aproximadamente 0,9 lts de cada solución nutritiva problema en los respectivos frascos.

2. Seleccione las plántulas y lave las raíces y séquelas con papel absorbente. Elimine el o los cotiledones.

3. Mida la altura de las plantas, longitud de raíces y número de hojas. Calcule los valores promedios para cada variable.

4. Coloque dos (2) plántulas en cada tapa. Sujételas cuidadosamente con algodón y una banda de goma.

5. Introduzca con sumo cuidado las raíces de las plántulas en los frascos correspondientes. Evite que el algodón entre en contacto con la solución.

6. Identifique claramente cada frasco

7. Marque el nivel inicial del líquido.

8. Recubra cada frasco con una bolsa de polietileno negro, identifíquelos y colóquelos en los mesones del cobertizo.

 ACTIVIDADES POSTERIORES

A objeto de lograr una información confiable, se deben realizar las siguientes actividades:

1. Observe las plantas dos veces a la semana, comparándolas entre sí. Anote todos los síntomas que se vayan presentando en cada solución: diferencias en coloración, forma de las hojas, tamaño de las plantas, etc.

2. Cada dos días proceda a airear la solución y completar su nivel con agua.

3. En la medida que se vayan presentando los síntomas, determine cuál es la solución completa.



LA RESPIRACIÓN:

La respiración celular consiste de una serie de procesos por los cuales los carbohidratos y otras moléculas orgánicas son oxidadas, con la finalidad de obtener energía (almacenada durante la fotosíntesis) y esqueletos de carbono, para ser usados en el crecimiento y mantenimiento de la célula

ESTE PROCESO OCURRE EN TRES FASES PERFECTAMENTE DEFINIBLES:

a. La glicólisis: ocurre en el citoplasma

b. El ciclo de Krebs: ocurre en las mitocondria y

c. El transporte de electrones y la fosforilación oxidativa que ocurren también en la mitocondria.

IMPORTANCIA DE LA RESPIRACIÓN:

producción energía metabólicas

producción de esqueletos de carbono para síntesis de nuevos compuestos

TIPOS DE RESPIRACIÓN CELULAR:

Respiración aeróbica: Hace uso del O2 como aceptor último de los electrones desprendidos de las sustancias orgánicas oxidadas

Respiración anaeróbica: No interviene el oxígeno, sino que se emplean otros aceptores finales de electrones, muy variados, generalmente minerales y, a menudo, subproductos del metabolismo de otros organismos.

OBJETIVO:

  • Medir la intensidad respiratoria del material en estudio, mediante el método de hidróxido de bario.
  • Comparar las tasa de respiración de los tejidos vegetales en estudio
  • Adquirir destreza para titular.
  • Verificar la influencia de la temperatura sobre la respiración.

MATERIALES

Semillas de maíz sin germinar y germinada, semillas de ajonjolí germinadas, semillas de girasol germinadas, semillas de leguminosas, plántulas parte aérea, radical, hojas adultas y jóvenes, uvas cambures y levaduras, capilares fiola, tubo de ensayos, vasos precipitado, compresor, hornillas eléctricas, respirometro, termómetro, acido clorhídrico (1N), Fenolftaleina, Hidróxido de bario y de sodio, Sacarosa, Tetrazolium



 MÉTODOS

1. Método del hidróxido de bario Se utilizara un aparato para la medición del CO2 .liberado

1. Coloque el material biológico en estudio, previamente pesado, en la fiola B del aparato para medición del liberado CO2 .

2. Haga pasar una corriente de aire durante el tiempo señalado por el profesor.

3. Al cabo de ese tiempo, tome una alícuota de 10 ml. Agrege 1 ó 2 gotas de fenolfstaleina. Titule con una solución de HCl 0,1 N, hasta que desaparezca el color rosado. Anote los ml. de HCl gastados.

4. Prepare un blanco: 10 ml de Ba(OH)2 + Fenolftaleina y titule de igual forma.

5. Calcule los mg de CO2 /100g/hora, utilizando la siguiente fórmula

 

mg de CO2 = D x N x 22*

D = blanco - Muestra N = Normalidad del acido utilizado 22 = Constante

*22 es el peso equivalente de CO2 = (12 + 32)/ 2 = 44/2 = 22

2. Influencia de la temperatura en el proceso de la respiración  

1. Prepare una solución de azúcar al 20%.

2. Tome dos tubos de ensayo y en uno de ellos vierta 50 ml de la solución de azúcar y añada 5 g de levadura. Al otro tubo añada solamente la solución de azúcar.

3. Sumerja ambos tubos a un vaso de precipitado que contenga agua. Realice el montaje según lo mostrado en la figura 23. Cuente el número de burbujas que se desprenden en ambos tubos.

4. Añada hielo al vaso de precipitado donde se encuentran los tubos y deje que la temperatura se estabilice en 10º C. Cuente el número de burbujas en un intervalo de 20 segundos y mida la temperatura nuevamente.

5. Luego coloque el vaso de precipitado que contiene los tubos sobre una hornilla eléctrica y caliente hasta alcanzar 20, 40 y 50º C. Anote el número de burbujas en cada caso.



HORMONAS

Se han definido como compuestos orgánicos, no nutrientes que actúan a muy bajas concentraciones (muy por debajo de la de otros compuestos: nutrientes, vitaminas) y que regulan procesos fisiológicos, y que en dosis altas los afectarían.

Las auxinas son sustancias producidas en pequeñas cantidades en la región apical de los tallos, coleóptilos y en los ápices de las raíces. Ellas estimulan la elongación de tallos, la actividad cambial, la partenocarpia, la formación de raíces adventicias y el desarrollo de los frutos.

Las giberelinas promueven la germinación de las semillas y la floración en plantas de días largos. Su síntesis aparentemente se realiza en sitios similares a los de las auxinas, pero no necesariamente al mismo tiempo. Las hojas jóvenes, los embriones en desarrollo y los ápices de las raíces son conocidos como sitios de producción de las giberelinas.

Las citocininas constituyen un grupo de hormonas vegetales que promueven la división celular y previenen el envejecimiento de las plantas. Ellas parecen actuar a nivel de los ácidos nucleicos y su síntesis, aparentemente está localizada en el sistema radical de la planta.

OBJETIVOS               

1. Observar el efecto del ácido indol butírico (AIB) en la dominancia apical.

2. Observar el efecto del ácido indol butírico (AIB) en la abscisión de hojas.

3. Observar el efecto de las auxinas en el enraizamiento.

4. Evaluar el efecto del etileno en el crecimiento de las plántulas.

5. Evaluar el efecto del ácido giberélico en el crecimiento de las plántulas.

 MATERIALES:

Ramas de plantas de mango, plántulas de caraotas, manzana o cambur maduro, acido indol butírico, acido giberelico, lanolina, campana de vidrio, hojillas, marcadores, recla, atomizadores



 MÉTODOS

Efecto del acido indol butírico en la dominancia apical

1. Tome tres plantas:Rama A: Testigo Rama B: Corte la yema apical. Coloque pasta de lanolina con ácido Indol butírico Rama C: Corte la yema apical y coloque pasta de lanolina Rama D: Corte la yema apical sin aplicar nada

EFECTO DEL ACIDO INDOL BUTÍRICO EN LA ABSCISIÓN DE HOJAS  

1. Tome tres ramas del árbol de mango seleccionado. Proceda a aplicar los siguientes tratamientos:

Rama A: Testigo. Rama B: Elimine todas las laminas foliares, dejando los pecíolos. En cada punto de corte coloque pasta de lanolina con ácido Indol butírico

Rama C: Elimine todas las laminas foliares, dejando los pecíolos. En cada punto de corte coloque pasta de lanolina. Rama D: Elimine todas las laminas foliares, deje los peciolos, sin aplicar nada.

3. Haga observaciones 2 veces por semana durante dos semanas, anote los resultados de caída de peciolos en su cuaderno de práctica e interprételos. 

EFECTO DE LAS AUXINAS EN LA FORMACIÓN DE RAÍCES ADVENTICIAS

1. Tome dos vasos de precipitado. Uno de ellos llénelo, hasta el nivel indicado por su profesor, con agua y otro con solución auxinica.

2. Cubra los vasos con papel de aluminio con cuidado de no derramar el contenido de los vasos

3. Perfore el papel de aluminio para hacer tres orificios.

4. Corte tres plántulas de caraota a un centímetro del cuello de la planta e introdúzcalas cuidadosamente en los orificios. Asegúrese que el extremo del tallo quede sumergido en el líquido.

5. Coloque las plantas en el lugar indicado por su profesor.

6. A la semana examine las plántulas para observar si hubo o no emisión de raíces adventicias.

7. Anote los resultados de la caída de los peciolos en su cuaderno de práctica e interprételos

GERMINACIÓN

Son el conjunto de procesos que se inician con la penetración del agua a la semilla y finaliza con la salida de la radícula. En el transcurso de la germinación se distinguen tres fases: la absorción del agua, la reactivación del metabolismo y la iniciación del crecimiento.

La primera fase es la imbibición, que se define como la absorción de agua por parte de los coloides de la semilla y se expresa generalmente en términos de porcentaje de agua absorbida. La segunda fase corresponde a una intensa actividad metabólica donde se incrementan procesos de síntesis y activación enzimática, respiración celular, etc. La germinación termina con el desarrollo de la radícula y su protusión fuera de las cubiertas seminales.

LA INFLUENCIA DE LA LUZ EN LA GERMINACIÓN ES VARIABLE, DEPENDIENDO DEL TIPO DE dependencia a este factor, las semillas se pueden clasificar en tres grandes grupos:

1. Semillas cuya germinación es promovida por la presencia de luz (fotoblasticas positivas)

2. Semillas cuya germinación es inhibida por la presencia de luz (fotoblasticas negativas)

3. Semillas que germinan en presencia o ausencia de la luz (indiferentes).

OBJETIVOS

1. Verificar la viabilidad de un lote de semillas.

2. Verificar que los tejidos en procesos de división y crecimiento celular poseen una elevada actividad respiratoria.

3. Evaluar la influencia de la temperatura en la germinación.

4. Determinar la influencia de la luz en la germinación.

5. Evaluar el efecto de las giberelinas en la germinación.

6. Evaluar el efecto de la salinidad en la germinación.

 MATERIALES:

 Semillas de diferentes especies, acido giberelico, agua destilada, Tetrazolium, nevera, papel absorbente, papel aluminio, capsula de petri, pipeta, cloruro de sodio



MÉTODOS:

EFECTO DE LA TEMPERATURA SOBRE LA GERMINACIÓN

1. Tome seis (6) cápsulas de petri y colóquele a cada una papel absorbente.

2. Coloque en cada una de ellas cincuenta (50) semillas de las especies en estudio, agregue el agua necesaria para humedecer el papel. 3. Identifique cada cápsula. 4. Coloque las cápsulas en las siguientes condiciones:

(a) Temperatura ambiente. (b) a 10 °C (nevera) 5. Observe cada día el número de semillas germinadas en cada caso y elimínelas. Repita la operación durante siete (7) días

EFECTO DE LA LUZ SOBRE LA GERMINACIÓN

1. Tome cuatro (4) cápsulas de Petri y colóqueles papel absorbente. 2. Disponga ordenadamente cincuenta (50) semillas de la especie en estudio, en cada una de ellas, agrégueles agua destilada suficiente para humedecer el papel. 3. Tome tres (3) de las cápsulas y cúbralas con papel aluminio. Deje la otra descubierta. 4. Coloque todas las cápsulas a temperatura ambiente. 5. Haga observaciones cada 48 horas en la cápsula expuesta a la luz. 6. Cuando en la capsula destapada tenga 20 o más semillas germinadas, destape la primera de las capsulas. Regrese a su lugar, la capsula que no tenia papel de aluminio y descarte la capsula que destapó. 7. Al día siguiente destape las segunda de las capsulas y cuente las semillas germinadas hay en cada caso. Proceda como el día anterior. 8. Destape la última de las capsulas al siguiente día y cuente las semillas germinadas en cada caso.

EFECTO DE LAS GIBERELINAS SOBRE LA GERMINACIÓN

1. Tome tres cápsulas de petri y colóqueles papel absorbente. 2. Disponga ordenadamente de cincuenta (50) semillas de la especie en estudio, en cada una de ellas. 3. Aplique los siguientes tratamientos: Cápsula A: Agua destilada en la luz Cápsula B: Agua destilada en la oscuridad Cápsula C: Acido giberélico (300 ppm) en la luz Cápsula D: Acido giberélico (300 ppm) en la oscuridad. 4. Las cápsulas en la oscuridad deben ser cubiertas con papel de aluminio de manera que no penetre la luz.

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